懸浮細胞總是在孵抗體和洗的時候被沖掉，懸浮細胞做免疫熒光怎么固定？

傳統方法

實驗步驟：

1. 細胞在冰浴中冷卻，然后用臺式離心機于4℃以800 g 離心5 min，吸去培養液并以4℃PBS重懸細胞。

2. 離心吸去PBS，以1~2 ml 2%PFA固定液，或2%PFA固定液/0.1% Triton X-100重懸細胞，置冰上固定30 min。

3. 離心、吸去固定液，用15 ml 4℃ PBS重懸細胞，放5 min 后，用PBS再次洗滌細胞。

4. 稀釋的第一抗體于4℃用微量離心機以13 500 g 離心2 min，250 μl 抗體足夠用于5x106細胞。

5. 離心細胞，吸去PBS，重懸細胞于第一抗體中，置4℃溫育1 h。

6. 用4℃ PBS稀釋細胞和抗體至15 ml。

7. 離心，吸去PBS，以4℃ PBS重懸細胞，重復1次。

8. 第二抗體4℃用微量離心機以13 500 g 離心2 min，5x106細胞用250 ul 抗體足夠。

9. 吸去PBS，以第二抗體重懸細胞，4℃溫育1 h，重復步驟6及步驟7。

10. 除非立即觀察細胞，否則在進行細胞濃縮的下一步操作之前應以鋁萡包裹離心管并冷藏。

11. 離心細胞并以少量PBS重懸（勿用水），將細胞懸液滴于多聚-L-賴氨酸覆層的載玻片上，加上蓋玻片，盡可能馬上觀察結果。 

鏡下觀察：沒有細胞，原來掉片了！??！

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